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SignalStar™ Multiplex IHCのトラブルシューティングガイド

SignalStar Multiplex IHCのキットおよび試薬は、手動プロトコールLeica Biosystems社のBOND RX自動染色装置用プロトコールの両方で最適化と検証が行われています。しかし、アッセイのトラブルシューティングが必要になった場合は、以下に記載の起こりうる問題や考えられる原因、推奨される対処法のリストを参照してください。

起こりうる問題

蛍光シグナルが検出されない

説明考えられる原因推奨される対処法
どのチャンネルにも蛍光シグナルがみられず、スライドはブランクである。染色プロセス中に、キットの重要な構成品が添加されていない可能性があります。アッセイを行う前に、すべての試薬を添加したことを確認してください。
その組織では、目的のバイオマーカーを発現していない可能性があります。

試薬に問題がないことを確認するために、コントロールスライドを使用してください。

組織に目的のバイオマーカーが発現していることを確認するために発色染色を行ってください。

蛍光シグナルが弱い

説明考えられる原因推奨される対処法
すべてのチャンネルにシグナルがみられるが、予想よりかなり弱い。SignalStarの試薬と溶液は、粘性があります。SignalStar Solution、特にAmplification Solution 1とAmplification Solution 2の攪拌が不十分であった可能性があります。低吸着ピペットチップを用いて、すべてのSignalStarキット構成品を混合し、室温で20分間、ローテーターで転倒混和してください。
Amplification Solution 2を添加する前の洗浄ステップ後に、Amplification Solution 1が残留していた可能性があります。各スライドがdH2Oに完全に浸されていることを確認し、Amplification Solutionを添加する前に余分な液体を組織の表面から振り落として除去してください。
BOND RX自動染色装置での溶液の洗浄が不十分であった可能性があります。BOND RX プロトコールに記載の通り、すべての洗浄ステップにおいて、BOND RXソフトウェアで「オープン」が選択されていることを確認してください。
スライドのイメージングが染色後8時間内に行われない場合、蛍光シグナルが消失する可能性があります。スライドのイメージングは、染色後は可能な限り早く、最大でも8時間以内に行ってください。
手動プロトコール中に実施された増幅のラウンド回数が8回未満であり、完全に行われなかった可能性があります。これらのステップ中に、手動プロトコールのチェックリストを使用してください。
BOND RXプロトコール中に実施された増幅のラウンド回数が6回未満であり、完全に行われなかった可能性があります。これらのステップ中に、BOND RXプロトコールのチェックリストを使用してください。
多くの組織で使用できるようにすべての抗体を入念に検証していますが、組織によって標的の性質や発現レベルが異なる可能性があります。抗体の量を2倍に増やすと、シグナル強度が増強される場合があります。
スキャン時に、間違った蛍光イメージング装置の設定やフィルターセットが使用された可能性があります。

488、594、647、750 nmのチャンネルの可視化に、正しいフィルターセットが使用されていることを確認してください。

プロトコールに記載されている蛍光チャンネルの詳細を参照してください。

Texas Redのフィルターセットが594 nmチャンネルの可視化に使用されていることを確認してください。TRITCフィルターは互換性がありません。

蛍光シグナルのうちの1つが検出できない

説明考えられる原因推奨される対処法
蛍光チャンネルのうちの1つでシグナルが全くみられないが、連続切片を用いた発色染色ではこのマーカーに対する強いシグナルが得られた。その蛍光チャンネル用の相補的なオリゴが添加されなかった可能性があります。アッセイを行う前に、すべての試薬を添加したことを確認してください。
その蛍光チャンネル用の増幅オリゴAまたはBが添加されていない可能性があります。アッセイを行う前に、すべての試薬を添加したことを確認してください。
スライドのイメージングに、間違ったレーザーおよびフィルターセットが用いられた可能性があります。プロトコールには、このアッセイに用いるすべての蛍光色素のレーザーやフィルターセット、励起、発光に関する情報が含まれています。お使いの機器の設定が合致していることを確認してください。
スキャン時に、間違った蛍光イメージング装置の設定やフィルターセットが使用された可能性があります。488、594、647、750 nmのチャンネルの可視化に、正しいフィルターセットが使用されていることを確認してください。プロトコールに記載されている蛍光チャンネルの詳細を参照してください。Texas Redのフィルターセットが594 nmチャンネルの可視化に使用されていることを確認してください。TRITCフィルターは互換性がありません。

バックグラウンドや自家蛍光が高い

説明考えられる原因推奨される対処法
パネル内の特定のチャンネルに、バックグラウンド蛍光がみられる。多くの組織で使用できるようにすべての抗体を入念に検証していますが、組織によって標的の性質や発現レベルが異なる可能性があります。抗体の量を0.5倍に減らすと、シグナル強度を維持しつつ、バックグラウンドレベルを低減できる場合があります。
すべての抗体は、プロトコールに記載されている抗原賦活法を用いた手法で検証されています。代替方法を用いた場合、バックグラウンドレベルが上昇する可能性があります。プロトコールに記載された抗原賦活法を実施したかを確認してください。
手動プロトコールを用いる場合は、ノイズを低減するために、チャンネル内で行う増幅サイクルを削減することができます。例えば、488、594、750 nmチャンネルでは8回の増幅サイクルを行い、647nmチャンネルでは6回だけ増幅サイクル行う場合は、まず、すべてのチャンネル用として増幅ラウンド6回分のAmplification Solutionを作製してください。次に、最後の2回の増幅ラウンドで用いる488、594、750 nmの増幅オリゴを含むAmplification Solutionを別に作製してください。
組織切片の壊死した部分に、 (発色染色と一致しない) 高いバックグラウンドがみられる。これを減らす方法はあるか?壊死した組織の染色は、どのアッセイ法であっても困難です。壊死した部分は、他の部分よりも「粘着性」があることが多々あるため、色素やオリゴ、抗体が非特異的に結合する場合があります。特異的なシグナルを維持しつつ、壊死領域の非特異的なシグナルは残らないように、抗体のタイトレーションを行ってください。あるいは、壊死した部分の染色が他の部分の特異的なシグナルと同程度に明るい場合は、可能であれば壊死していない部分だけの撮影を試みてください。
自家蛍光の強い脳組織切片を使用した際に、488 nmチャンネルに高いバックグラウンドがみられる。これを最小化するにはどうすればよいか?検出されたバイオマーカーのシグナル強度が弱く、自家蛍光が高いことが原因の可能性があります。

弊社の最適化の過程では、様々なタイプの腫瘍や組織を利用していますが、すべての組織で検証を行ったわけではありません。自家蛍光が高い組織やすぐに固定を行わなかった組織などでは、どのアッセイ法であっても染色が困難な場合があります。オリゴ標識抗体のタイトレーションを行うことにより、シグナルを強めたり弱めたりできる場合があります。さらに、TrueBlack Liposfuscinのような自家蛍光を減少させることを目的とした試薬を使用することもできます。

パネルデザイン時に自家蛍光を考慮し、発現が低いバイオマーカーではなく、発現が高い表現型マーカーを488 nmチャンネルに配置してください。

シグナルが重複する

説明考えられる原因推奨される対処法
1つのチャンネルにおいて、複数のバイオマーカーの蛍光シグナルがみられる。1回目のイメージングラウンドおよび2回目のイメージングラウンドに用いる相補的なオリゴが誤って組み合わされたことにより、同じチャンネル内で2つのバイオマーカーが増幅された可能性があります。同じ蛍光チャンネルに用いる相補的なオリゴを、同じイメージングラウンドで組み合わせないでください。1回のイメージングラウンドに含めることができる、各蛍光チャンネルの相補的オリゴは1つのみです。
スキャン時に、間違った蛍光イメージング装置の設定やフィルターセットが使用された可能性があります。

488、594、647、750 nmのチャンネルの可視化に、正しいフィルターセットが使用されていることを確認してください。プロトコールに記載されている蛍光チャンネルの詳細を参照してください。Texas Redのフィルターセットが594 nmチャンネルの可視化に使用されていることを確認してください。TRITCフィルターは互換性がありません。

お手持ちのイメージング装置の特性がこれらの蛍光チャンネルを分離するのに理想的でない場合は、スペクトルライブラリーを使用して蛍光シグナルをコンピューター上で分離することができます。

特定のバイオマーカーと同様のシグナルが複数の蛍光チャンネルにみられる。例えば、647 nmチャンネルの染色が、594 nmチャンネルに存在するバイオマーカーと類似している。

594 nmチャンネルでのバイオマーカーの発現がなく、このチャンネルにシグナルがほとんどない、または全くないことが原因である可能性があります。

または、647 nmチャンネルでの発現が高く、594 nmチャンネルへのシグナルのスペクトルの漏れ込みが生じた可能性があります。

この場合、594チャンネルの弱い特異的なシグナルが、この現象によりかき消される可能性があります。

647 nmチャンネルに添加する抗体の量を減らすことにより、このシグナルの漏れ込みを解決できる可能性があります。

シグナルが強い表現型マーカーと発現レベルがより低いマーカーのスペクトルを分離できるように、パネルを設計する際にスペクトルの漏れ込みを考慮してください。

BOND RXのソフトウェアにエラーが出る

説明考えられる原因推奨される対処法
BONDのタイトレーション用インサートがキャリアから浮き上がることにより、BOND RX自動染色装置が誤動作し、染色が完了しなかった。SignalStarアッセイを、1回目のイメージングラウンドと2回目のイメージングラウンドの両方で行った後、吸引プローブ洗浄サイクルが実行されていない可能性があります。SignalStarの各ラウンドが完了したら、毎回吸引プローブの洗浄サイクルを実行してください。

機器のプロバイダーに、追加の情報とサポートについて問い合わせてください。
BOND RXソフトウェアで、コンテナに関するエラーメッセージ「Empty 」が表示された。BOND RX自動染色装置は、コンテナが過充填状態になると「Empty」であるとみなします。

空のコンテナに、SignalStar試薬を充填しすぎないでください。容器を再度スキャンした際に「Empty」と表示されていたら、「Mark not empty」をクリックし、「Refill」をクリックします。適量の試薬が添加されていることを確認してください。

BOND RXプロトコールに記載の通り、一部の試薬は複数のコンテナを必要とします。

機器のプロバイダーに、追加の情報とサポートについて問い合わせてください。

BOND RXソフトウェアでエラーメッセージ「There is insufficient reagent.」が表示された。SignalStar Multiplex IHCプロトコールに記載されている正しい量の溶液を用いても、BOND RX自動染色装置が「試薬が不十分」であるとみなす場合があります。再度、コンテナを充填してスキャンを試みてください。このエラーを解除するには、新しいコンテナを使用する必要があるかもしれません。

機器のプロバイダーに、追加の情報とサポートについて問い合わせてください。

SignalStarに関するトラブルシューティング情報や技術的な質問に対する回答は、テクニカルサポートページをご覧ください。

Cell Signaling Technology, CST, and SignalStar are trademarks of Cell Signaling Technology, Inc. Cy is a registered trademark of GE Healthcare. All other trademarks are the property of their respective owners. Visit cellsignal.com/trademarks for more information.

U.S. Patent No. 10,781,477, foreign equivalents, and child patents deriving therefrom.